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Figure 5.13 Examples of BCG genomic deletions
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Figure 5.14 BCG genealogy deduced from microarray-detected d
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Figure 5.16 Calcineurin signaling circuit DNA microarray dat
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Figure 5.17 Drug effects on wt and mutant cells
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Figure 5.20 NCI60 gene expression dendrogram
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Figure 5.21 Gene cluster for melanoma cell lines
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Figure 5.22 Clustered image map
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Figure 5.23 Correlation between ASNS expression and chemosen
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FIgure 5.24 Comparison of microarray and Northern blot data
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Figure 5.25 Effect of leptin on food intake and body mass fo
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Figure 5.26 Cluster overviews of leptin-treatment and pair-f
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Figure 5.29 Cluster overviews of leptin treatment and pair-f
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Figure 5.30 Comparison of transcriptional and posttranscrip
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Figure 6.1 Diagram of mTn
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Figure 6.2 Phenotype macroarray analysis.
2006-04-15 00:00
Figure 6.3 Macroarray analysis of metabolic path-ways
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Figure 6.4 Region of interest in yeast genome, including put
2006-04-15 00:00
Figure 6.5 Clustered microarray phenotype data
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Figure 6.7 Bar code microarray
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Figure 6.8 Analysis of bar code DNA microarrays
2006-04-15 00:00
Figure 6.10 Structural proteomics of an Archaea
2006-04-15 00:00
Figure 6.12 Structural method to discover new medications
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Figure 6.13 Functional consequences of protein conformation
2006-04-15 00:00
Figure 6.14 Yeast two-hybrid method
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Figure 6.15 Proteomics circuit showing the interactions of R
2006-04-15 00:00
Figure 6.17 Protein interactions grouped by cellular compart
2006-04-15 00:00
Figure 6.18 Two-dimensional (2D) gel electrophoresis
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Figure 6.19 Tandem mass spectrometry for protein identificat
2006-04-15 00:00
Figure 6.20 Protein identification through peptide fragment
2006-04-15 00:00
Figure 6.21 Phagosome 2Dgel
2006-04-15 00:00
Figure 6.22 Localization of phagosome proteins
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Figure 6.23 Cathepsin composition during phago-some maturati
2006-04-15 00:00
Figure 6.24 Quantifying differences in proteomes
2006-04-15 00:00
Figure 6.28Schematic of ICAT method
2006-04-15 00:00
Figure 6.30 Reversible metabolic pathway for ethanol and gal
2006-04-15 00:00
Figure 6.31 Reversible switch in metabolism
2006-04-15 00:00
Figure 6.33 Comparison of two protein micro-arrays
2006-04-15 00:00
Figure 6.35 Detecting the targets of small molecules on prot
2006-04-15 00:00
Figure 6.36 Microwell array manufacturing
2006-04-15 00:00
Figure 6.37 Coupling substrate to the array of microwells
2006-04-15 00:00
Figure 6.38 Measuring the rate of product formation from a s
2006-04-15 00:00
Figure 6.39 Variation between enzymes
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Figure 6.40 Capillary electrophoresis of single-cell proteom
2006-04-15 00:00
Figure 7.2 Sea urchin S. purpuratus embryogenesis.
2006-04-15 00:00
Figure 7.3 Location and timing of Endo16 expression.
2006-04-15 00:00
Figure 7.4 Endo16 transcription during sea urchin developmen
2006-04-15 00:00
Figure 7.5 Endo16 cis-regulatory element (horizontal black l
2006-04-15 00:00
Figure 7.7 Photomicrographs showing the location of CAT mRNA
2006-04-15 00:00
Figure 7.8 Three DNA constructs to elucidate the roles of mo
2006-04-15 00:00
Figure 7.10 Repressive functions of modules F, E, and DC on
2006-04-15 00:00
Figure 7.11 Effect of LiCl on the cis-regulatory element Con
2006-04-15 00:00
Figure 7.12 Measurement of CAT protein produced in 20- to 72
2006-04-15 00:00
Figure 7.13 The role of module G
2006-04-15 00:00
Figure 7.14 Circuit diagram of the Endo16 cis-regulatory ele
2006-04-15 00:00
Figure 7.15 Regulation of module B activity
2006-04-15 00:00
Figure 7.16 The roles of Endo16 cis-regulatory element modul
2006-04-15 00:00
Figure 7.17 Module A and Bp showing protein binding sites
2006-04-15 00:00
Figure 7.18 CAT output (molecules per embryo) with different
2006-04-15 00:00
Figure 6.41Significant changes in metabolomes when comparing
2006-04-15 00:00
Figure 7.19 Role of Otx site in the output of module A
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