采用當家品種下寨65和青薯168.

1.2 試驗方法

1.2.1 催芽 于11月中旬左右，挑揀表皮光滑、正常薯形、大小均勻、無病害和無損傷薯塊，放置在有供暖的房間，室內溫度24 ℃左右進行催芽。在催芽前薯塊正處于休眠期，采用0.05~0.l0 mg/L的GA3來處理薯塊，浸沒于GA3溶液中10~20 min,以打破休眠[4].

1.2.2 種薯處理 采用MS培養基，加入不同配比的激素，準備BA、NAA、GA3、IBA和IAA,由于激素在培養基中用量非常少，且不易溶于水，所以采用特殊的配置方法，配置成500 mg/L的溶液待用。當兩個品種的種薯芽長到2~3 cm時，挑選生長健壯的芽，用清水沖洗芽部表面污物，在無菌操作室采用12種不同的方法進行表面消毒，用最近制作的蒸餾水沖洗四五次，將表面消毒劑徹底清除，不同表面消毒劑處理時間見表1.

1.2.3 莖尖組織培養 在解剖鏡下剝取大小為0.30~

0.50 mm莖尖生長點，置于不同濃度生長調節劑的MS培養基上進行培養，培養基編號為MS1~MS12,另設不加任何生長調節劑的MS培養基作為對照（CK），植物生長調節劑配比見表2.

1.2.4 馬鈴薯脫毒苗培養 在無菌條件下，將得到的無毒苗進行切段，每段帶一葉，置于不同種類、濃度的1/2MS培養基中進行培養，中國農業網以不加任何生長調節劑的1/2MS培養基作為對照，編號為M1~M9,快繁培養基配比見表3.

2 結果與分析

2.1 不同表面消毒方法對莖尖成活率和污染的影響

從表4可以看出，在莖尖組織培養過程中，外植體在清水沖洗后，直接采用0.1 %升汞或5 %次氯酸鈉消毒，都可以將污染控制在5 %以下，但需時稍長，不同程度地影響到成活率。另外由于升汞的滲透性強，不宜徹底清洗，且對環境污染嚴重，建議盡量不要使用。

2.2 不同生長調節劑培養基配比對莖尖組織生長的影響

從表5可以看出，不含生物調節劑的培養基，馬鈴薯莖尖組織的生長非常緩慢，導致成苗率低下。在同等條件下，KT和6-BA對馬鈴薯莖尖組織的生長都具有促進作用，且效果顯著，就這兩種物質而言，含有KT的培養基中成苗率較低。在同等條件下加入GA3,可明顯促進馬鈴薯莖尖組織分化，加快生長，提高成苗率。

2.3 不同生長調節劑配比對馬鈴薯脫毒苗快繁的影響

經過觀測表明，與對照培養基相比較，培養基中加入生長調節劑后，芽萌發推遲，有效促進幼根生長。生長調節劑濃度過大時，愈傷組織發達，生根受到抑制。在實驗中觀察到下寨65對NAA較為敏感，濃度稍大就會產生較大愈傷組織，生根較為緩慢，而青薯168反應較為遲鈍，結果見表6.

3 結論

通過實驗發現，在馬鈴薯脫毒技術實施過程中，采用酒精與其他兩種表面消毒劑配合使用效果最好，能有效控制污染，降低對莖尖組織的影響。剝離的莖尖組織誘導成苗是脫毒快繁的關鍵技術，在實驗中，KT和BA均有助于莖尖組織分化成苗。在快繁中，適當濃度的生物調節劑對馬鈴薯莖段生根有促進作用，但當濃度過高時只產生分生組織，不利于小苗生根，而且各品種表現有所不同。