一、染色體顯帶
顯Q帶法
1.漂洗：取經過干熱預處理或已老化的染色體標本，置于pH6.0緩沖液中浸5~10分鐘。
2.染色：浸入pH6.0的GM或QD染液中5~10分鐘。
3.漂洗：浸入新鮮pH6.0緩沖液中漂洗兩次，每次5分鐘。
4.觀察：向標本染色體面滴1~2滴新鮮緩沖液，覆以蓋片（避免出氣泡），置熒光顯微鏡下觀察。
顯G帶法
胰酶-Giemsa混合顯帶法
1．預處理：取中期染色體標本，置60℃～60℃溫箱中20～30分鐘，或在37℃溫箱過夜，然后浸入0.025M磷酸緩沖液中，pH6.8，56℃溫浴10分鐘。
2．消化和染色：用現配制的胰蛋白酶-Giemsa混合液消化和染色10～30分鐘，混合液按如下比例配制：
0.025 M 磷酸緩沖液pH6.8 73.0 ml
甲醇 27.0 ml
Giemsa干粉 50.0 mg
0.25%胰酶 0.3～0.4 ml
3．封片：染色后用自來水沖洗，入蒸餾水漂洗數次、晾干、二甲苯透明2~3分鐘，封入中性樹脂中。
Giemsa顯帶法
1．預處理：將標本置入60~80℃溫箱或烤箱中20~30分鐘，亦可在37℃溫箱過夜。
2．胰酶消化：用0.85%的NaCl配制0.25%胰蛋白酶溶液消化3~5分鐘。
3．染色：取出標本片，先直立于吸水紙上除去多余胰酶液后，隨即置入Giemsa染液中，染10分鐘。
4．封片：自來水洗，蒸餾水漂洗，晾干，二甲苯透明2~3分鐘，封入中性樹膠中。
二、姐妹染色單體分化染色
BUdR摻入和制片程序
1．BUdR培養液制備：先制備好含BUdR的培養液（最終濃度為3~10微克/毫升）。
2．BUdR摻入：如用傳代細胞，在末次傳代后，改換用含BUdR的培養液培養。如為人末梢血細胞，一開始就用含BUdR培養液培養（培養瓶放在特制黑色木盒、黑布中或黑紙包裹）37℃溫箱內培養。
3．中止摻入與制片：待細胞經歷兩個細胞周期（人周圍血細胞培養48或72小時）
4．加秋水仙素—制片。
姐妹染色單體分化染色
方法一
1．老化：中期染色體標本老化1~2天。
2．預處理：放入預熱至85~89℃的1 M NaH2PO4處理15分鐘。
3．制片：然后用溫蒸餾水輕輕漂洗，蒸餾水沖洗，晾干，Giemsa液染色10分鐘，晾干，二甲苯透明，封固。
方法二：即FPG法
1．標本：摻入BUdR后的中期染色體標本。
2．熒光染色：用熒光染料Hoechst 33258（用pH7.0 Sorensen緩沖液配制，濃度為0.5微克/毫升）染色12~15分鐘。
3．黑光燈照射：自來水沖洗，加1滴pH8.0 緩沖液，覆以蓋片，用黑光燈照射（20 W），距離5厘米，時間半小時。
4．溫浴：50~60℃熱的2×SSC液溫育2小時，蒸餾水沖洗，晾干。
5．染色：pH6.8的2%Giemsa染色15分鐘，透明封固。
方法三
1．標本：摻入BUdR后的中期染色體標本，置30瓦日光燈下，燈距3厘米，照射6小時。
2．溫浴：用2×SSC液（60℃）處理15分鐘。
3．Giemsa染色10分鐘，也可獲得滿意的標本。
三、染色體脆性位點的檢測
為提高檢出率，可采取以下措施：
1．在培養時把血清量降到5%。
2．用不含葉酸的MEM-Fra培養基培養。
3．PH調至7.5。
四、微核檢測
方法一：
1．采血：靜脈采血0.5ml，肝素抗凝，用小方瓶培養，加培養液5ml。培養液租成為：含20%小牛血清的Eagle液，加PHA 40微克/毫升。
2．培養：置37℃溫箱內培養48或72小時，以1000rpm離心8分鐘。
3．固定：3：1甲醇/冰醋酸固定3次，每次15分鐘，離心沉淀固定液。
4．制片：冷凍載片滴片法制片，自然干燥，10%Giemsa（pH6.8）染色15分鐘。
方法二
1．采血：肝素抗凝血0.5~0.6ml，置10ml試管中，加入血量一半的0.5%甲基纖維素，充分混合。
2．培養：置37℃溫箱中靜置培養30分鐘，以2000rpm離心10分鐘，去上清液。
3．制片：做涂片，Wright法染色。
方法三
1．采血：用三棱針刺無名指取血0.6ml，立即注入內徑3mm，長5cm的血液沉淀管中，用小玻璃棒攪拌除去纖維蛋白。
2．加明膠：加入3%的明膠，小心混勻，置37℃溫箱自然沉降50分鐘。
3．吸去上清液，離心，沉淀物涂片，自然干燥，Wright染色30分鐘，再用Giemsa染色2分鐘。
五、非程序DNA合成檢測（UDS）
放射自顯影UDS的測定：
1．細胞培養：WI-38成纖維細胞，完全培養液支持物蓋片培養法培養，細胞生長至匯合時。
2．抑制DNA合成：棄舊培養液，加入不含精氨酸的EMEM培養液，繼續培養20~24小時。
3．加測試物：加入10mM羥基脲（陽性對照加MNNG），培養2小時。
4．H-TdR處理：2、3、4每皿內加3H-TdR后，培養20~24小時。
5．漂洗：去除培養液，用不含鈣、鎂BSS漂洗。
6．制片：制備放射自顯影標本方法固定細胞、涂膠、曝光、顯影及染色。
7．觀察：在油鏡下計數，首先要排除S期半保留復制細胞（為銀粒覆蓋的細胞核），只計數核上的銀粒數目，再扣除本底，結果以銀粒數/核的均值或含10個銀粒左右細胞的百分率表示。
液閃計數法：
1．細胞培養和處理：人二倍體成纖維細胞：接種在培養皿中培養。
2．加培養液、MNNG、羥基脲，以及3H-TdR處理等于前5項相同。自（5）漂洗后。
3．消化：用0.25%胰蛋白酶消化，制成懸液。
4．液閃計數標本制備：10%三氯醋酸處理，將細胞收集在玻璃纖維濾紙片上，無水乙醇脫水烤干，置液閃杯中，加閃爍液，置液閃計數儀上計數。結果以dpm/106細胞或cpm/每皿細胞表示。