一、操作方法
1.準備工作
用配件中的橡膠管根據結構側面示意圖連接好管路，注意接緊，防止漏水。在左邊托盤放上空的消化管，右邊放上空的容量瓶。
2.蒸餾
打開電源，儀器自動進入加水狀態，待加水工作完成后會自動停止。然后打開水龍頭開關。為排空管路內空氣，實驗前請先按下加酸
鍵，待液體流順暢后停止加酸；加堿同樣操作。按下蒸餾鍵，儀器開始進入蒸餾狀態，待蒸氣自動從噴射管中噴出并穩定后，關閉開關。
在左邊托盤換上已消化冷卻好的樣品，右邊托盤放上250ml 三角瓶，并使長嘴玻璃管口碰到杯底。再打開電源，依次按加酸、加堿、蒸餾
鍵對樣品進行蒸餾（加酸、加堿量設定自行）。蒸餾完畢后，將三角瓶下移，使接收管離開液面，用水沖洗出氣口，繼續蒸餾半分鐘后，
取下三角瓶待滴定用。第二個樣品同上方法。
3. 關機
先放上空的消化管和容量瓶，把連堿泵的膠管放入蒸餾水容器內，用手動模式按加堿按鍵抽蒸餾水清洗堿泵，酸泵同樣清洗。
然后關掉進冷卻水龍頭，取下消化管，打開側面排水水龍頭，待燒杯內水冷卻后排去燒杯內的水和冷卻水，最后關電結束。
4．滴定
用0.05mol/LHCL 滴定接收瓶內的溶液，滴定至(暗)灰色時為止，記下消耗HCL 的毫升數，按下列式子計算蛋白含量：

式中：X—樣品中蛋白質的含量，%
V1—樣品消耗硫酸或鹽酸標準液的體積，ml；
V2—試劑空白消耗硫酸或鹽酸標準液的體積，ml；
N—硫酸或鹽酸標準溶液當量濃度；
0.014—1N 硫酸或鹽酸標準溶液1ml 相當于氮克數；
m—樣品的質量（體積），g（ml）；
F—蛋白質系數，按16%計算乘以6.25 即為蛋白質。
(空白測定：用0.1 克糖代替樣品或不加樣品作空白測定)

二、注意事項
1．消化時如氣體外逸，加大自來水壓力。消化密封圈外壁每次實驗結束清洗一遍延長使用壽命。
2． NaOH 溶液因長期不用，管里容易產生粘固現象，每天工作完切換到手動模式把NaOH 溶液外接皮管移入蒸餾水瓶內，前面套好
消化管抽洗幾次，待下次使用時，在蒸餾時須排出100ml NaOH，以防第一個樣品NaOH 濃度不夠。過一段時間用稀酸清洗一下蒸發爐并
用清水過洗幾次。
3.為避免干擾，保證儀器正常運行及人身安全，操作過程中必須嚴格接地線。
4．如果操作不當，10A 保險絲燒斷后，請拔去電源插頭，換上新的后，關水龍頭，打開排水水龍頭排盡蒸發爐水，按照開機調試步
驟重新開機操作。